
基于sgRNA的相關問題討論
發布時間:
2018-12-24
1、Q:請教老師,我設計的sgRNA 與非靶序列相似度多大時會把這個非靶標基因也編輯了?是否可以理解為:在遠離pam端有4個及以內的與靶序列不同堿基的序列都是可以被編輯的。即脫靶到了那些序列。
A:有脫靶機會,但通常識別活性會比較低,一般地,脫靶是需要盡量避免的。如果想要敲除兩個以上基因,需要針對要敲除的基因分別設計crispr以制備不同的sgRNA。
2.
Q:crispr/Cas13在gRNA設計上有什么要注意的嗎?是否可以保留cas9所用的80bp骨架只更換gRNA?
A:Cas13的sgRNA與cas9的完全不同,不能使用cas9對應的sgRNA骨架。
3.
Q:sgRNA的骨架與靶點CRISPR的結合緊密程度是否會影響打靶的效率?
A:sgRNA的骨架序列并不與crispr(基因組上的特定DNA序列)結合,識別crispr序列的是102nt(20+82 nt)sgRNA中的前20 nt(gRNA序列),通過gRNA與crispr序列的互補識別,sgRNA引導Cas9靶向切割crsipr中3'側(靠近PAM即NGG)的3至4 nt間的3‘-5’磷酸二酯鍵,形成雙鏈斷裂(DSB)。
4.
Q:請問我設計人基因的sgRNA的時候,發現保守結構域所在的外顯子很少有比較高得分的,甚至說很低,請問這種情況應該怎么辦?
A:crispr評分問題,綠色沒有問題,黃色勉強能用,紅色不能用(估計是在基因組中有相同序列,1個sgRNA將識別多于1個靶向位點,脫靶問題驗嚴重),實在為難的話,可crispr設計的區域提前到前一個外顯子。另外,建議使用CCTOP軟件設計crispr
Q:我們也在使用CCTOP這個軟件,但是發現有時排名靠前的卻評分為中等或低,不知道如何選擇。
A:評分的高低只是參考,medium應該是不錯的。那個評分是來自一篇研究論文,如果閱讀原文,你會發現數據的樣本量不是太大,且相關系數不是太大。所以效率評分僅作參考。選擇crispr時,不能在基因組中存在明顯的脫靶位置的序列。
Q:那么CCTOP選擇是優先考慮排名是嗎?例如從T1-T2-T3...
A:還是優選那些脫靶機會低的crispr,(看候選脫靶序列的相似性,盡可能選那些候選脫靶序列具3個mismatch的,然后在按效率的高低選。
5.
Q:如果做RT-PCR驗證,引物是不是需要特異性針對設計sgRNA對應的轉錄本?
A:是的,需要將靶向突變位置的cDNA擴增出來,注意,由于擔心基因組上基因組序列的改變可能會影響原始mRNA的剪接,因此,設計引物時,最好是在目標序列的前面和后面的外顯子上分別設計正反向引物。
6.
Q:我做了一個CRISPR的基因敲除,目前在挑單克隆時送測了24個,亞克隆的情況多數出現兩組峰:一組是非移碼突變的,一組是有突變的(插入一個堿基或者突變成其它氨基酸),請問這種情況是我克隆沒挑夠還是基因本身的生理原因造成的?。?/span>
A:單克隆測序應該不會出現“兩組峰”!你是將細胞克隆的基因組DNA的PCR產物直接送測序?還是將其亞克隆后再挑選陽性轉化子去測序的?如果是后者,你是否想說你的陽性轉化子克隆測序結果表明:一組(若干個克?。榉且拼a突變,一組(24個克隆中的另外一些克?。┦怯型蛔兊模ú迦胍粋€堿基)?
Q:是的,是亞克隆測序,一組為非移碼突變,一組為突變。我送了十個單克隆出去測TA都是這個樣子,我想說,能不能把之前的sgRNA的病毒再感染一下這些單克隆,可否拿到雙槍的結果?
A:?你首先需要確認原先的sgRNA識別的序列在候選細胞克隆的基因組序列中是否已被突變?如果已經突變了,則sgRNA無法再次發揮左右(一般地,如果已經發生突變即使是非移碼突變,其crispr序列應該已經突變)。
7.
Q:我想請問下sgRNA設計中,有些網站把PAM序列也弄到sgRNA里了,有些網站又沒有,那我們設計sgRNA的時候需要把PAM也加進去嗎?
A:常用CRISPR設計軟件
1、http://crispr.mit.edu
2、http://crispr.cos.uniheidelberg.de/index.html
3、http://crispor.tefor.net/
4、http://www.rgenome.net/cas-designer/
5、http://zifit.partners.org/ZiFiT/
這里需要區別兩個名詞:CRISPR vs sgRNA;一些文獻常將這兩個詞混用(我們最初的培訓講義也是混用的)。實際上,sgRNA是RNA形式的分子。在基因組編輯中,sgRNA引導Cas9靶向識別CRISPR序列,其中的PAM(CRISPR序列臨近的3個核苷酸NGG為PAM)作為CRISPR序列在基因組上的一個標記,對于靶向識別至關重要,靶向識別的結果是Cas9的兩個核酸內切酶結構域(兩把”分子剪刀“)將PAM前的3-4核苷酸間的3'-5’磷酸二酯鍵切斷,造成DSB(雙鏈斷裂)。DSB出現后,誘發細胞針對該DSB進行NHEJ或HR修復,產生不同編輯子。篩選不同的編輯子,有希望獲得KO或KI的等位基因。從上述描述可以看出,CRISPR序列是一個DNA序列(不包括PAM),而由此合成的sgRNA則是用來識別該DNA序列的。張鋒把CRISPR + PAM 序列稱作Guide 序列,我們在講課中使用這一說法。在使用軟件設計CRISPR序列時,需要將目標DNA序列(包括假定的PAM序列)都輸入,如果沒有PAM,就不可能設計出CRISPR序列。
Q:那還有一個問題老師,我想請問下軟件里設計的sgRNA會不會有的是反義鏈上的序列呢,如果有的話我們需要把它互補配對回來再加CACC(g)嗎?是否只需要直接在給出的序列前面加CACC(g)就行?
A:加什么序列取決于你使用的驅動sgRNA表達的空載體中啟動子的序列,CACC應該是人U6啟動子的最后4個核苷酸序列。
8.
Q:用T7啟動子資料說轉錄起始位點是G或A ,但是ZiFiT網站是GG,是不是三個都可以,要是20個核苷酸的CRISPR序列首位不是這三個G, A或者GG, 自己手動添加到里面是不是也可以?
A:CRISPR序列一般以G開頭,這是由于轉錄自嘌呤(主要是G,有時為A)開始(是為轉錄起始位點)。如果crispr(20nt)序列的前2 nt是GG,在以T7啟動子(前17 nt)為驅動的體外轉錄中,當然是最好,如果crispr(20 nt)不是以G開頭,可以加1-2個G(一般加1個G即可),多了1-2G的sgRNA被證明不影響引導常用Cas9(spCas9)識別crispr序列的活性,但不能有效引導espCas9(保真版Cas9)識別crispr序列。
9.
Q:如果U6啟動子啟動轉錄多了一部分序列會對sgRNA的轉錄及效率產生影響嗎?就是:U6+一小段序列+BbsI-sgRNA-BbsI這樣的設計,這一小段序列對整個結構的影響很大嗎?
A:轉錄本身可能沒有什么問題,但轉錄產物不是你原來設計的sgRNA。最近有報道說多出來幾個nt可能對引導spCas9識別crispr序列影響不大,但是你提出的這種設計方式顯然不是推薦的方式,其結果是很可能不能獲得你期待的基因組編輯作用?。
Q:看測序結果的時候我們應該看哪里,理想中的是在設計的三個sgRNA的位點出突變嗎?還是在某個sgRNA附近突變也可以。
A:DSB一般出現在PAM前的3-4bp之間。NHEJ修復在此發生,因此,Indel突變(插入缺失突變)主要發生在位置的附近,當然也會有較大(甚至更大)片段刪除的情況出現。每個crispr位置都可能出現突變(如果對應的sgRNA都有活性的話)。但當有活性的sgRNA同時出現時,造成大片段刪除的機會大增。在這種情況下,常常仍能發現indel突變發生在每個crispr位置上的痕跡(即突變主要出現在PAM前的3-4bp附近)。
10.
Q:一個基因上如果我同時對2個sgRNA位點進行編輯,這兩個sgRNA距離多遠合適?是最好在同一個外顯子上嗎?
A:你的目的是希望敲除這個基因,還是希望制造出兩個Indel突變位點?如果是前者,我們建議二者之間的距離不要超過 200 bp (越近越好)。如果是后者,則建議相距200 bp之外,越遠越好。
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